# Test oxydase

**1) Intérêt**

La recherche de l’oxydase présente un intérêt taxonomique en ce qui concerne les bactéries   
à Gram -.

**2) Principe**

Le test consiste à mettre en évidence la capacité que possède la bactérie à oxyder un réactif incolore (la NN-diméthyl-paraphénylène diamine) en un dérivé rose violacé.

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**3) Technique**

- Placer un disque oxydase sur une lame à l’aide d’une pince stérilisée au bec électrique.
- Avec une pipette Pasteur prélever une colonie sur milieu solide et la déposer   
    doucement sur le disque.

**Remarques :**

- Il existe des disques mais aussi des bandelettes oxydases.
- Ne pas utiliser l’anse métallique pour prélever les bactéries. En effet, le métal peut   
    être recouvert d’un oxyde et donner un résultat faussement positif.
- Le milieu solide ne doit pas contenir d’indicateur de pH, ni de glucides.

**4) Lecture**

La réaction entre la bactérie et le disque ne met que quelques secondes à se faire.

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**Causes d’erreurs :**

- Réalisation du test sur un milieu glucidique (une fermentation peut cacher une respiration
- Quantité de bactéries insuffisante ( prélever plusieurs colonies si une ne suffit pas)
- Réactif périmé (l tester avec une souche oxydase + et une souche oxydase -)
- Utilisation d’un instrument « oxydase + » ( anse de platine, objet métallique)
- Lecture trop tardive : au delà de 30 secondes