Valorisation nutritionnelle des déchets alimentaires
FLIEG FLORIAN : Florian.Flieg068@orange.fr
MADA Amira : amiramada01@gmail.com
DIAKHABY DIENABA : diakhabydienaba13@gmail.com
MOHAMMAD HOSSEIN POUR BANAFSHEH : Banafshehmhp@gmail.com
Contexte:
- Alternative sans gluten (cible primaire)
- Alternative saine pour l'alimentation (cible secondaire)
- Alternative éco-responsable pour les personnes soucieuses de l'environnement (cible tertiaire)
=> À destination de toutes classes sociales
Problématique:
Comment donner une seconde vie à nos épluchures de bananes ?
Objectif:
- Créer un projet innovant multi-usages à destination des personnes intolérantes au gluten
- Valoriser des déchets alimentaires (peaux de bananes)
Matériel:
- Séchage : Four
- Lyophilisation : Lyophilisateur
- Mesure de l'activité de l'eau : Appareil Rotronic (logiciel Aw Quick)
- Mesure de l'humidité : Balance de précision
- Mesure du pH : pH mètre
- Dénombrements des mesures et moisissures : Hotte microbiologique, tubes à essais pour dilution, boites pétri, milieu de culture Sabouraud, eau physiologique, pro-pipette, étuves d'incubation
- Dénombrements des germes totaux : Hotte microbiologique, tubes à essais pour dilution, boites pétri, milieu de culture Sabouraud, eau physiologique, pro-pipette, étuves d'incubation
-
Mesure des glucides : Spectrophotomètre et cuves, tubes à essais, pipette, bêches, fioles jaugées, burette, centrifugeuse à deux principes, solution de glucose (0,005 mol/L), solution DNS.
- Mesure des protéines: BSA (2% et 0,2%), plaque 96 puits, pécan (lecteur de DO), kit de dosage BCA
- Mesure du contenu en fibres : méthode AOAC, méthode NSP, méthode UTDF
Date : Lundi 25 Novembre 2024 ; Heure : 14h – 17h30
Lieu : FabLab
Compte rendu des manipulations : Valorisation des déchets alimentaires "peaux de bananes en poudre"
Mise au point du matériel du laboratoire et validation des protocoles :
- Accès au laboratoire.
- Identification du matériel et de la matière première.
- Etablissement du protocole.
- Préparation du matériel et de la matière première.
Début du travail :
- Stérilisation du matériel.
- Préparation des épluchures de banane. (Figure 1)
- Découpage des épluchures de banane et dressage sur de l’aluminium alimentaire. (Figure 2)
- Séchage au four à haute température pendant 2h à 65 C°. (Figure 3)
- Broyage des peaux de banane séchées à l’aide d’un mortier
- Tamisage de la poudre pour éliminer toutes particules.
- Codification des échantillons.
Figure 1 : Peaux sur plaque d'aluminium
Figure 2 : Peaux découpées (pré-séchage)
Figure 3 : Four XUEII2 utilisé (65°C)
Résultats des manipulations :
°Après 2h de séchage => peaux légèrement humides, brunies (Figure 4). Odeur conservée.
Figure 4 : Peaux post séchage (2h)
Conclusion => Poursuite du séchage sur la nuit à 65C°
Date : Mardi 26 Novembre 2024 ; Heure : 9H50 – 10H10
Lieu : FabLab
°Après 16h30 de séchage => de 17h30 jusqu'à 10H
Remarques: - Peaux sèches, brunies (Figure 5).
- Odeur conservée.
Figure 5 : peaux post séchage (16h30)
Date : Mardi 26 Novembre 2024 ; Heure : 14H – 18H
- Broyage des peaux de banane séchées à l’aide d’un mortier ( Figure 6 )
- Tamisage de la poudre pour éliminer toutes particules.
- Codification des échantillons.
Figure 6 : Broyage des peaux de banane avec un mortier
Figure 7 : Pesée de la poudre de peaux de banane obtenue
Tests physico-chimiques :
Figure 8 : Mesure du taux d'humidité de la poudre de banane
Calcul du taux d'humidité de la poudre de bananes : 5%
Poids de la poudre avant 4.21g et après 4.01g pour 110°C
Date : Mercredi 27 novembre 2024 ; Heure : 14H – 18H
- Mesure de l'AW et du pH du Test n°1
- Lancement d'un nouveau processus de séchage Test n°2
- Lavage des peaux dans de l'eau salée (50g de sel) pendant 10 minutes.
- Pesée des peaux pré-séchage (279,44g).
- Mise sur grille et séchage à 65°C pendant 17h.
Peaux séchées après 17h à 65°C
Date : Jeudi 28 novembre 2024 ; Heure : 10H – 12H
Réduction en poudre du 2nd séchage
- Broyage des peaux de banane séchées à l’aide d’un mixeur
- Tamisage de la poudre pour éliminer toutes particules. (0,25mm) (mettre photo)
- Codification des échantillons.
Mixeur et tamis
- Pesée de la poudre
- Pesée des déchets non tamisés
Mesure du taux d'humidité de la poudre de banane (2ème échantillon)
- Pesée de l'échantillon (3,01g)
- Mesure de l'humidité (dessiccateur OHAUS)
- Pesée de l'échantillon déshumidifié (2,90g)
=> Humidité dans l'échantillon = 3,01 - 2,90 = 0,11g
Poids pré dessiccation Poids post dessiccation
Mesure de l'activité de l'eau :
Pesée de l'échantillon (1g)
=> Activité de l'eau = 0,320 AW
Mesure du pH:
- 5g de poudre dilués dans 50 mL d'eau
=> pH = 5,83
Date : Jeudi 28 novembre 2024 ; Heure : 14H – 17H
Préparation des milieux de culture bactériens :
°Milieu PCA : dénombrement des germes totaux: 200mL
- Tryptone : 1 g
- Extrait de levures : 0,5g
- D-Glucose : 0,25g
- Agar : 3g
- QSP 200 mL eau distillée
°Milieu Sabouraud chloramphénicol : dénombrement de levures et moisissures : 200mL
- Peptone : 2g
- D-Glucose : 4g
- Chloramphénicol : 0,5g
- Agar : 3g
- QSP 200 mL eau distillée