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Label vert: La larve mangeuse de plastique

Nom : LE TOQUIN Juliette, SOUFIANI Noha, BOUATIR Fatima Ezzahraa, FERNANDES Alizée

Projet : La larve Galleria Mellonella mangeuses de plastique (PS/PEBD)


Introduction:

Le plastique est une matière qui pollue Ă©normĂ©ment et elle se retrouve bien trop souvent dans l’environnement.  Le problème qui se pose est la dĂ©gradation totale ou partielle du plastique. On souhaite donc au travers de notre projet prĂ©senter une nouvelle mĂ©thode de dĂ©gradation du plastique qui est encore en cours de dĂ©veloppement. En effet, des recherches rĂ©centes ont essayĂ© de dĂ©terminer la capacitĂ© de certaines larves Ă  dĂ©grader le plastique. 

 

Objectif : Notre projet a pour but d’étudier l’efficacité de l'une des larves étudiée, la larve Galleria Mellonella, à dégrader le plastique et de pouvoir comparer les différents résultats. Dans notre cas nous prendrons deux types de plastiques différents: du polyéthylène basse densité (PEBD) et du polystyrène (PS). En effet, nous cherchons donc à mettre en confrontation nos différentes expériences.

  • Etude bibliographique et documentation
  • CrĂ©ation d'un poster
  • ExpĂ©rience au Fablab (Biologie-Chimie et Prototypage)


Galleria mellonella (Gm) est une espèce de Lepidoptera dans la famille Pyralidae. NommĂ©e teigne de ruche, est une larve que l'on utilise principalement pour la pĂŞche. Son cycle de dĂ©veloppement varie de 4 semaines Ă  6 mois selon les conditions et comprend 4 phases (Ĺ“uf, larve, nymphe et adulte). C'est dans les alentour de Mars qu'elle se dĂ©veloppe et atteint son pic autour d’AoĂ»t. Dans le cadre de ce projet, nous allons nous intĂ©resser seulement Ă  son stade de larve.


Expérimentation/Manipulation:

I/ Protocole expérimental: Préparation des tests + témoin

Fablab prototypage: 

  1. Broyer les bouteilles en PEBD 

Fablab de biologie:

  1. Nettoyer les béchers/erlenmeyers/cristallisoirs à l'éthanol
  2. Faire des copeaux de cire d'abeille Ă  l'aide d'un Ă©conome/scalpel
  3. Emietter le PS en petits morceaux
  4. Avant toutes prĂ©parations, peser les rĂ©cipients, le PEBD, le PS, les copeaux de cire, et les larves Ă  l'aide d'une balance de pesĂ©e 
  5. Mises en places des tests/tĂ©moins* : 
  • TĂ©moin: BĂ©cher de 500 ml + 10.85 g de cire + 45 larves Gm (18.855 g) 
  • Test 1: BĂ©cher de 250 ml + 10.85 g de cire + 33 larves Gm (15.9 g) + 0.7 g de PS
  • Test 2: BĂ©cher de 250 ml + 10.85 g de cire + 33 larves Gm (15.5419 g) + 10.8 g de PEBD
  • Test 3: Erlenmeyer de 250 ml + 36 larves Gm + 17.15 g de PEBD
  • Test 4: Erlenmeyer de 250 ml + 44 larves Gm + 1 g de PS
  • Test 5: Cristallisoir de 795 g + 29 larves Gm (14.6296 g) + 2,6301 g de PEBD (film alimentaire). Le cristallisoir est recouvert par son couvercle en verre.
  • Test 6: Cristallisoir de 991.84 g + 10.88 g de cire + 38 larve Gm (18.1318 g) + 2.7634 g de PEBD (film alimentaire). Le cristallisoir est recouvert par son couvercle en verre.
  • Test 7: BĂ©cher de 800 ml (243.38 g) + 40 larves (18.547 g) + 1.0735 g de PS

     6.  Mettre les tests/tĂ©moin dans une grosse boĂ®te en plastique que l'on mettra dans une salle close, sans lumière, Ă  22-                  23°C.

* rĂ©cipients couverts avec du papier aluminium rempli de petits trous 

 

II/ Observations: 

Dates, T(°C),  TĂ©moin

Test 1

Test 2 Test 3 Test 4 Test 5
Test 6
Test 7

27/03/2023, 14h40, 22°C

8 mortes 8 mortes 10 mortes  X X X X X

29/03/2023, 16h21, 23°C

6 mortes 1 morte 4 mortes 12 mortes 9 mortes X X X

31/03/2023, 9h57,

23°C

4 mortes* 5 mortes 1 morte*

8 mortes* + perte de PE

13 mortes* X X X

03/04/2023, 11h17,

22°C

2 mortes *


0 morte


5 mortes *


5 mortes 10 mortes X X X
05/04/2023, 11h, 22.5°C

0 morte *


0 morte *


0 morte *


0 mortes 6 mortes X X X

07/04/2023, 12h,

24°C

0 morte

2 mortes

0 morte

1 morte
0 morte
X X X
11/04/2023, 13h53, 23°C

1 morte

0 morte

0 morte *

1 morte 1 morte 2 mortes X 1 morte
13/04/2023, 









17/04/2023









19/04/2023









  • 23/03/2023, 12h, 23°C: mise en place du tĂ©moin et des tests 1 et 2 ( arrivĂ©e des larves depuis 2j (au frais))
  • 27/03/2023, 14h50, 22°C: mise en place des tests 3 et 4 (arrivĂ©e jour mĂŞme)
  • 07/04/2023, 12h, 24°C: mise en place du test 5 (arrivĂ©e des larves la veille (au frais))
  • 11/04/2023, 15h15, 23°C: mise en place des tests 6 et 7 (arrivĂ©e des larves le 6/04/23 (au frais))

05/04/2023: diminution forte de la cire

* prĂ©sence de soie 

III/ Analyses expĂ©rimentales

Analyses IR en ATR:

  • 31/03/2023: obtention du spectre IR du PS d'origine, du PEBD d'origine, puis comparaison avec les spectres IR de l'intĂ©rieur d'une larve morte (test 1) et (test 2) = pas prĂ©sence de PEBD et de PS dans les larves
Nom du plastique PEBD PS
Pic(s) caractéristique(s)

Alcane

  • Elongation C-H:  ... cm-1 (forte intensitĂ©)
  • DĂ©formation C-H:  ... cm-1 (... intensitĂ©)

Alcane

  • Elongation C-H:  ... cm-1 (forte intensitĂ©)
  • DĂ©formation C-H:  ... cm-1 (... intensitĂ©)

Aromatique

  • Elongation C-H:  ... cm-1 (moyenne intensitĂ©)
  • DĂ©formation C-H:  ... cm-1 (forte intensitĂ©)
  • Elongation C=C: ... cm-1 (forte intensitĂ©)
  • 17/04/2023:


Matériel nécessaire à la réalisation de nos expériences:

  • Fablab de Biologie: 350 larves Gm vivantes, bloc de cire d'abeille, 1 bĂ©cher de 500 ml, 2 bĂ©chers de 250 ml, 2 erlenmeyers de 250 ml, 2 cristallisoirs, papier aluminium alimentaire, une Brucelles en plastique, plaque de polystyrène, 2 bouteilles en PEBD, thermomètre mercure, scalpel, Ă©conome 
  • Fablab de Chimie: Accessoire ATR diamant, Ă©thanol de nettoyage
  • Fablab prototypage: broyeuse

BIBLIOGRAPHIE: